DILUCIONES SERIADAS PARA LA OBTENCIÓN DE UN CULTIVO AXÉNICO.
Introducción.
Una dilución en serie es la
reducción progresiva, paso a paso, de la concentración de una sustancia en
disolución. Por lo general, el factor de dilución en cada paso es constante, lo
que da como resultado una progresión geométrica de la concentración, en forma
logarítmica. Las diluciones en serie se utilizan para crear disoluciones muy
diluidas con precisión, así como disoluciones para experimentos en los que se
pretenda estudiar curvas de concentración con una escala logarítmica. Las
diluciones en serie son ampliamente utilizadas en las ciencias experimentales,
incluyendo bioquímica, química, farmacología, microbiología y física, así como
en la homeopatía.
El factor de dilución es el
número total de volúmenes al que se lleva un volumen dado de muestra original,
o parte alícuota. En otros términos, el factor de dilución también corresponde
a la división de la concentración de la muestra original sobre la concentración
de la muestra diluida.
En biología y medicina, además de
los usos más convencionales, descritos anteriormente, la dilución en serie
también se puede utilizar para reducir la concentración de microorganismos o
células de una muestra. Como, por ejemplo, el número de colonias de bacterias
que crecen en una placa de Petri en un momento dado depende de la
concentración, y dado que muchas otras técnicas de diagnóstico implican contar
físicamente el número de microorganismos o células en ciertas áreas impresas
dentro de una rejilla (comparando las concentraciones de dos tipos de células o
microorganismos en la muestra) o en cavidades de un volumen determinado (para
concentraciones absolutas), la dilución puede ser útil para obtener resultados
más manejables o para tener un número definido de colonias de cultivo en cada
placa. La dilución en serie es también un método más barato y más sencillo para
preparar los cultivos de una sola célula que el empleo de pinzas ópticas y
micromanipuladores.
Objetivos.
-Realizar diluciones seriadas de
dos muestras para obtener un cultivo axénico.
-Aplicar la técnica de estriado
en placa usando perlas de vidrio.
-Realizar adecuadamente la
técnica de vertido en placa para el aislamiento microbiano.
Metodología.
Extensión en placa.
Se preparan con las mediciones
que se muestran a continuación medios de cultivo YPD y Caldo Nutritivo Sólido:
CALDO NUTRITIVO:
Para 1000 ml
|
|
Peptona
|
5.003 g
|
Extracto de Carne
|
3.006 g
|
Agar Bacteriológico
|
14.998 g
|
Cloruro de Sodio
|
3.002 g
|
YPD
Para 1000 ml
|
|
Dextrosa
|
20 g
|
Peptona
|
20 g
|
Agar Bacteriológico
|
20 g
|
Extracto de levadura
|
10 g
|
Esterilizamos en el autoclave
nuestros medios de cultivo, tubos eppendorf, puntas amarillas, perlas y 150 ml
agua destilada (aproximadamente) durante una hora aproximadamente, después
continuamos con la preparación de las diluciones seriadas.
Todo el proceso que viene a
continuación tiene que realizarse dentro de la campana de flujo laminar.
Tomamos 1 g de nuestra muestra (Piña en descomposición y la diluimos en 5 ml de
agua destilada y esterilizada (previamente en el autoclave).
En la dilución seriada, una suspensión con mil millones de células
por mililitro debe ser diluida 107 veces para obtener una suspensión con un
centenar de células por mililitro, Por tanto, se realizan diluciones seriadas
(en varias etapas), normalmente de diez en diez, pero a veces de cien en cien.
Para realizar diluciones de diez en diez, se añade 1 ml de la suspensión
bacteriana a 9 ml (le medio estéril o solución salina, igualmente estéril. Se
agita vigorosamente para diluir las células y el proceso se repite cuantas
veces sea necesario. A continuación, se puede proceder de dos maneras
diferentes.
Las muestras diluidas se siembran
directamente en la superficie de la placa de agar, extendiéndolas con ayuda de
un asa de cristal estéril. La suspensión se absorbe en el agar, dejando las
células microbianas sobre la superficie. En ambas técnicas las placas se
incuban hasta la aparición de las colonias. Como en el método de siembra por
estría, no existe la seguridad de que las colonias que aparecen en las placas
sembradas por extensión o en el agar solidificado sembrado por el método del
vertido en placas sean cultivos axénicos hasta que se repita el proceso.
Transcurridas 24 horas de
realizar la siembra de microorganismos por dilución seriada en placa,
realizamos tinción Gram de la siguiente forma:
-Limpiar el portaobjetos con
gasas y encender el mechero.
-Colocar una gota de agua
destilada y luego esterilizar el asa bacteriológica.
-Tomar una pequeña muestra de la
cepa y diluirla en el portaobjetos.
-Posteriormente esterilizar el
asa.
-Fijar la muestra al calor
flameandola en el mechero, cuidando no quemar la muestra.
-Colocar el portaobjetos sobre un
soporte.
-Cubrir la muestra con cristal
violeta, esperar 1 minuto y enjuagar.
-Cubrir la muestra con solución
de Lugol, esperar 1 minuto y enjuagar.
-Cubrir la muestra con
alcohol-acetona, esperar que transcurran 5 segundos y enjuagar.
-Cubrir la muestra con safranina,
esperar 1 minuto y enjuagar.
-Dejar secar la muestra.
-Observar en el microscopio con
todos los aumentos.
-Agregar 1 gota de aceite de inmersión y observar en
el microscopio a 100x.
Por último, esterilizamos
nuestros residuos (Cajas Petri ó medios de cultivo) durante 1 hora en el
autoclave y rotulamos.
Los residuos se empaquetan y
guardan en el laboratorio (refrigerador), una vez ya Esterilizados pueden ser
desechados en la parte trasera del Laboratorio de Bioquímica.
Materiales.
-20 Cajas Petri.
-Tubos eppendorf.
-Puntas amarillas y Azules para
micropipetas.
-Micropipetas de 1000 y 200 ul.
-3 Frascos de vidrio.
-Matraz Erlenmeyer.
-3 Vasos de precipitados de 100
ml.
-2 Agitadores.
-Balanza.
-Parrilla.
-Mechero Bunsen.
-2 Asas bacteriológicas.
-1 Parrilla de tinción.
-5 Pipetas Pasteur con Bulbo.
-1 Recipiente de plástico de 500
ml.
Equipo:
-Autoclave.
-Campana de flujo laminar.
-Microscopio.
Reactivos:
-Peptona de caseína.
-Cloruro de Sodio.
-Extracto de Carne.
-Agar Bacteriológico.
-Extracto de Levadura.
-Dextrosa.
-Cristal Violeta.
-Lugol.
-Alcohol acetona.
-Safranina.
-Aceite de inmersión.
Resultados.
Para los medios de cultivo con la
siembra a través de diluciones en serie con extensión en placa transcurridas 48
horas:
COLONIAS
|
ELEVACIÓN
|
FORMA
|
|
10^1
|
1
|
CONVEXA
|
CIRCULAR
|
10^2
|
20
|
CONVEXA
|
CIRCULAR
|
10^3
|
INCONTABLES
|
NO PRESENTA
|
NO PRESENTA
|
10^4
|
1
|
PLANA
|
RIZOIDE
|
10^5
|
INCONTABLES
|
MARTICULAR
|
RIZOIDE
|
10^6
|
NINGUNA
|
PLANA
|
CIRCULAR
|
10^7
|
10
|
PLANA
|
LAMENTO
|
YPD A LAS 24 HORAS
COLONIAS
|
ELEVACIÓN
|
FORMA
|
|
10^1
|
3
|
CONVEXA
|
CIRCULAR
|
10^2
|
INCONTABLES
|
CONVEXA
|
CIRCULAR
|
10^3
|
INCONTABLES
|
NO PRESENTA
|
NO PRESENTA
|
10^4
|
4
|
PLANA
|
RIZOIDE
|
10^5
|
INCONTABLES
|
MARTICULAR
|
RIZOIDE
|
10^6
|
5
|
PLANA
|
CIRCULAR
|
10^7
|
INCONTABLES
|
PLANA
|
LAMENTO
|

CALDO NUTRITIVO
SOLIDO A LAS 16 HORAS (Muestra Piña en Descomposición)
COLONIAS
|
ELEVACIÓN
|
FORMA
|
|
10^1
|
3
|
CONVEXA
|
CIRCULAR
|
10^2
|
NINGUNA
|
NO PRESENTA
|
NO PRESENTA
|
10^3
|
NINGUNA
|
NO PRESENTA
|
NO PRESENTA
|
10^4
|
25
|
CONVEXA
|
CIRCULAR
|
10^5
|
NINGUNA
|
NO PRESENTA
|
NO PRESENTA
|
10^6
|
NINGUNA
|
NO PRESENTA
|
NO PRESENTA
|
10^7
|
NINGUNA
|
NO PRESENTA
|
NO PRESENTA
|

CALDO NUTRITIVO
SOLIDO A LAS 24 HORAS
COLONIAS
|
ELEVACIÓN
|
FORMA
|
|
10^1
|
8
|
CONVEXA
|
CIRCULAR
|
10^2
|
5
|
CONVEXA
|
NO PRESENTA
|
10^3
|
NINGUNA
|
NO PRESENTA
|
NO PRESENTA
|
10^4
|
INCONTABLES
|
CONVEXA
|
CIRCULAR
|
10^5
|
NINGUNA
|
NO PRESENTA
|
NO PRESENTA
|
10^6
|
NINGUNA
|
NO PRESENTA
|
NO PRESENTA
|
10^7
|
NINGUNA
|
NO PRESENTA
|
NO PRESENTA
|
Tinción Gram.
Transcurrieron aproximadamente 10 días después de que se
realizó la siembra quedando guardado 7 días en el Refrigerador del Laboratorio
de Bioquímica para interrumpir el crecimiento de las colonias en los medios de
cultivo. Después de realizó Tinción Gram a nuestras muestras.
Discusiones.
-Las diluciones seriadas en
extensión de placa que presentan saturación en colonias (incontables) y
presentan cultivos mixtos son las siguientes:
10^1, 10^2, 10^3.
Por lo cual se deduce que estas
muestras no son factibles para poder obtener un cultivo axénico (puro) ya que
la muestra que se suministró en el medio está demasiado Saturada y por lo tanto
no se puede realizar lo mencionado.
-Las diluciones seriadas en
extensión de placa que presentan un número de colonias contable y no saturado,
así como distribuido y manejable son las siguientes:
10^4, 10^5.
Por lo cual son factibles para
obtener un cultivo axénico (puro) ya que estas diluciones no se encuentran
saturadas y a la vez no se encuentran
muy diluidas y pueden presentar colonias dentro de nuestro medio de
cultivo.
-Las diluciones en extensión de
placa que no presentan un número
suficiente de colonias para obtener un cultivo axénico (puro) son las
siguientes:
10^6 y 10^7.
Estas diluciones no son factibles
para obtener un cultivo axénico al igual que las que presentan saturación, por
lo tanto procedemos a esterilizar con estas muestras.
-Al realizar la tinción Gram se
llega a la conclusión de que los colorantes (Cristal violeta, lugol, safranina)
no se encuentran 100% factibles para realizar una tinción adecuada y poder
determinar si los microorganismos son Gram positivo o negativo.
Así mismo el decolorante Alcohol
cetona actúa de manera eficaz contra la coloración de los mencionados
anteriormente ocasionando que los microorganismos no puedan teñirse y
observarlos con eficacia en el microscopio.
-El vertido en placa no se
realizó ya que no poseíamos los conocimientos de la práctica correcta de esta
técnica.
Conclusiones.
-Podemos obtener un cultivo axénico (puro) con los resultados de
las diluciones 10^4 y 10^5 de nuestras muestras de YPD y de Caldo Nutritivo
(Piña y Leche en descomposición respectivamente).
-Las diluciones restantes fueron
esterilizadas y desechas después de haber aplicada Tinción Gram en ellas y
analizado en el microscopio.
-Se realizaron correctamente las
diluciones en extensión de placa.
-Se realizó correctamente la
siembra de las diluciones por medio de perlas esterilizadas.
-Los objetivos fueron cumplidos
correctamente.
Bibliografía.
Brock. (2001). Biología de los
Microorganismos. USA: 10
Brock. (1997). Microbiología.
USA: 4.
Anexos.
Dextrosa: La glucosa es un
monosacárido con fórmula molecular C6H12O6. Es una hexosa, es decir, contiene 6
átomos de carbono, y es una aldosa, esto es, el grupo carbonilo está en el
extremo de la molécula.
Fórmula: C6H12O6
Masa molar: 180,1559 g/mol
Denominación de la IUPAC:
D-glucose
Punto de fusión: 146 °C
Densidad: 1,54 g/cm³
Soluble en: Agua, Ácido acético
Extracto de Carne: El extracto de
carne es un caldo de carne muy concentrado, normalmente de vacuno. Se usa para
dar sabor a carne a diversas recetas, y para elaborar consomés y sopas.
El extracto de carne fue
inventado por barón Justus von Liebig, el químico orgánico alemán del siglo
XIX. Liebig se especializó en la clasificación de la comida y escribió un
ensayo sobre cómo cocer la carne sin destruir su valor nutricional. Movido por
ell deseo de ayudar a los desnutridos, en 1840 desarrolló un extracto de vaca
concentrado, extractum carnis Liebig, para proveer de un sustituto barato y
nutritivo de la carne a quienes no podían adquirirla. Por desgracia, se
necesitaban 30 kg de carne para producir 1 kg de extracto, lo que lo hacía
demasiado caro.
Peptona de Caseína: Peptona de
caseína es un digerido enzimático de caseína. Se utiliza en la formulación de
medios de cultivo de una amplia variedad de microorganismos.
ASPECTO: Polvo amarillento.
Ensayo
Análisis
Nitrógeno Amínico (AN) 3.1 %
Nitrógeno Total (TN) 12.6 %
AN / TN 24.6 %
Solubilidad en agua Soluble
Pérdidas por secado 4.9 %
Cenizas 6.2 %
pH (solución 2%) 5.7
Extracto de Levadura: es un
extracto soluble en agua formado por el autolisado de células de levaduras. Es
un producto rico en vitaminas especialmente del complejo B, aminoácidos y otros
factores de crecimiento. Es utilizado en microbiología en la preparación de una
amplia variedad de medios de cultivo como excelente fuente de nutrientes.
También se obtiene como producto residual de la elaboración de la cerveza,
empleándose en la industria de la alimentación frecuentemente como aditivo.
Agar Bacteriológico: Es un agua
soluble de extracto coloidal obtenido a partir de ciertas especies de marinos,
algas rojas, incluyendo Gelidium, Pterocladia, y Gracilaria. Las impurezas,
residuos, minerales y pigmentos se reducen a niveles específicos durante su
fabricación.
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